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L’incapacité des cellules ciliées de la cochlée à se régénérer empêche le rétablissement de la perte auditive. Il semble toutefois possible de réactiver ces cellules «dormantes». La question est comment.
Les cellules ciliées de la cochlée jouent un rôle essentiel dans la fonction auditive. La perte de ces cellules est souvent une cause importante d’apparition de la perte auditive[1]. La cochlée adulte des mammifères ne dispose pas de la capacité à régénérer spontanément de nouvelles cellules ciliées, étant donné que les cellules de soutien sont inactives dans cette phase[1,4–6].
Néanmoins, des études in vitro précliniques montrent sur des cellules de soutien de la cochlée de souris néonatales que les cellules progénitrices peuvent effectivement se transformer en cellules ciliées[2]. Ces découvertes permettent à la régénération des cellules ciliées de la cochlée de rester une piste intéressante pour réparer la lésion auditive.
Des équipes de chercheurs se sont aussi focalisés sur la cartographie des mécanismes qui sont à la base de la régénération des cellules ciliées de la cochlée.. Des facteurs et des voies de signalisation moléculaire, susceptibles d’avoir une influence sur la prolifération et la différenciation des cellules souches et des cellules précurseurs, sont à l’étude. Ces facteurs peuvent stimuler ces cellules à se développer en cellules ciliées.
Une étude récente in vitro a ainsi montré qu’un inhibiteur de la glycogène synthase kinase-3 (CHIR99021) associé à l’acide valproïque (VPA) a un effet synergique pouvant activer des cellules ciliées de la cochlée adulte «dormantes»[6]. Et ce tant dans les cellules de souris, de primates que d’humains. Ces données ont incité les chercheurs à étudier la combinaison CHIR99021 et VPA (FX-322) dans un cadre clinique[8].
La thérapie génique est une autre piste de stimulation de la réparation des cellules ciliées de la cochlée[11]. Dans ce cas aussi, il est important de comprendre les processus moléculaires et cellulaires à la base du développement de l’oreille interne. C’est ainsi que le facteur de transcription ATOH1 est essentiel pour le développement des cellules ciliées de la cochlée et ce facteur est également responsable de la prédisposition des cellules ciliées[12].
Des expériences précliniques montrent que des cobayes traités avec la thérapie génique Atoh1, via l’utilisation de vecteurs adénoviraux, présentent un nombre significativement plus élevé de cellules ciliées de la cochlée, comparé aux cellules de l’oreille interne non traitées[13]. Le gène Atoh1 contrôle en effet le développement des cellules ciliées[13]. En amenant l’expression de ce gène dans l’oreille interne, les cellules de soutien sont stimulées à se différencier en cellules ciliées[13]. La même étude n’a toutefois pas observé d’améliorations fonctionnelles après une surdité induite chez ces animaux, mais laisse quand même la porte ouverte à l’association de la thérapie génique et des traitements pharmacologiques ou à l’utilisation de la thérapie génique dans le cas de lésions auditives moins graves[13].
Malgré les progrès enregistrés dans le domaine de la thérapie génique et de la thérapie des cellules souches cette dernière décennie, ces techniques en restent au stade préclinique quand on en vient à la régénération des cellules ciliées de la cochlée[14]. Un aspect important dans le développement des thérapies régénératives est la compréhension des mécanismes complexes responsables de la fonction de l’oreille interne pour optimaliser les interventions thérapeutiques[15]. En attendant, les appareils auditifs pour la perte auditive légère à modérée et les implants cochléaires pour la surdité totale resteront probablement la référence absolue[14].
1. Shu, Y.; Li, W.; Huang, M.; Quan, Y.-Z.; Scheffer, D.; Tian, C.; Tao, Y.; Liu, X.; Hochedlinger, K.; Indzhykulian, A.A.; et al. Renewed proliferation in adult mouse cochlea and regeneration of hair cells. Nat. Commun. 2019, 10, doi:10.1038/S41467-019-13157-7.
2. PM, W.; A, D.; YS, L.; AK, G.; N, S. Mammalian cochlear supporting cells can divide and trans-differentiate into hair cells. Nature 2006, 441, 984–987, doi:10.1038/NATURE04849.
3. ST, S.; R, C.; TA, J.; BH, H.; RD, L.; F, G.; W, S.; AG, C.; K, O.; S, H. Intrinsic regenerative potential of murine cochlear supporting cells. Sci. Rep. 2011, 1, doi:10.1038/SREP00026.
4. ME, W.; PR, L.; BJ, G.; A, F.; JT, C. Regenerative proliferation in inner ear sensory epithelia from adult guinea pigs and humans. Science 1993, 259, 1619–1622, doi:10.1126/SCIENCE.8456285.
5. A, F.; L, L.; JT, C.; G, N. Ultrastructural evidence for hair cell regeneration in the mammalian inner ear. Science 1993, 259, 1616–1619, doi:10.1126/SCIENCE.8456284.
6. McLean, W.J.; Yin, X.; Lu, L.; Lenz, D.R.; McLean, D.; Langer, R.; Karp, J.M.; Edge, A.S.B. Clonal Expansion of Lgr5-Positive Cells from Mammalian Cochlea and High-Purity Generation of Sensory Hair Cells. Cell Rep. 2017, 18, 1917, doi:10.1016/J.CELREP.2017.01.066.
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8. McLean, W.J.; Hinton, A.S.; Herby, J.T.J.; Salt, A.N.; Hartsock, J.J.; Wilson, S.; Lucchino, D.L.; Lenarz, T.; Warnecke, A.; Prenzler, N.; et al. Improved Speech Intelligibility in Subjects With Stable Sensorineural Hearing Loss Following Intratympanic Dosing of FX-322 in a Phase 1b Study. Otol. Neurotol. 2021, 42, e849, doi:10.1097/MAO.0000000000003120.
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